5. План химико-токсикологического анализа

План определяется:

- Поставленными вопросами

- Данными сопроводительных документов (обстоятельства дела, выпис­ка из истории болезни, акт судебно-медицинского вскрытия трупа и др.)

- Наружным осмотром объектов исследования (характер объекта, окрас­ка, специфический запах, наличие посторонних включений, рН среды).

Устанавливаются, какие внутренние органы трупа или их части доставлены на исследование. Для жидких объектов - вязкая или подвижная жидкость, для порошкообразных - аморфное или кристаллическое вещество. Консервирование объектов исследования

Внутренние органы трупа при транспортировке могут консервироваться только чистым этиловым спиртом. Этиловым спиртом не консервируют тогда, когда объекты направлены для исследования на наличие этилового спирта или нитритов. О консервировании объекта спиртом должно быть указано в сопроводительных документах, так как некоторые химические операции, например минерализация органических веществ концентрированными H₂SO₄ и HNO₃, несовместимы с наличием этанола в объек­те и требуют его удаления. При консервировании этиловым спиртом объ­екта исследования в лабораторию вместе с объектом направляется контрольная проба того же спирта в тех же количествах, которые применя­лись для консервирования. При отсутствии контрольных проб этилового спирта составляется акт, где отмечается этот факт. Акт направляется организациям, приславшим объект на исследование. Консервирование объекта формалином, глицерином, фенолом и др. веществами недопустимо, так как формалин (40% раствор формальдегида в воде) сам является ядом и, кроме того, влияет на результаты анализа метилового спирта. В случае неправильного консервирования объектов исследования составляет­ся акт с указанием возможного влияния консервантов на результат химического анализа и этот акт отправляют организациям, отправившим объекты исследования в лабораторию.

Зaпax объекта исследования

Специфический запах объекта исследования ориентируют химика при составлении плана анализа, например зaпax горького миндаля может указывать на наличие синильной кислоты, нитробензола, бензойного альдеги­да. Однако, запах тех или иных веществ могут маскировать продукты гниения биологического материала.

Осмотр инородных включений и их анализ

Биологический материал, особенно желудок, должен быть внимательно осмотрен сначала невооруженным глазом, затем при помощи лу­пы. Все инородные частицы должны быть удалены, осмотрены и проанализированы. Возможно нахождение форфоровидных крупинок оксида мышья­ка (Ш), призматические кристаллы нитрата стрихнина, части или семе­на растений. Исследование отобранных кусочков растений, грибов, семян, порошка индийской конопли и др. должны производить лица, имеющие зна­ния в области фармакогнозии. Определение реакции среды на лакмус и другие индикаторы

Эта проба имеет наибольшее значение и про­ведение её обязательно в начале каждого химико-токсикологического анализа. Она ориентирует химика эксперта на расширение или сокращение объема судебно-химического исследования.

Для определения реакции среды небольшое количество объекта помещают в пробирку, смешивают с небольшим объемом дистиллированной воды, а затем вытяжку наносят на лакмус. При этом возможны: кислая, щелочная и нейтральная среды.

Кислая среда может быть вызвана:

а) наличием свободных неорганических и органических кислот

б) наличием малых количеств кислот, образующихся в результате биохимических процессов

в) наличием кислых солей сильных кислот

г) наличием солей тяжелых металлов

Если реакция среды объекта по лакмусу кислая, то исключается его исследование на наличие едких щелочей (NaОН, KОН). В этом случае для составления плана дальнейшего исследования необходимо определить реакцию среды еще по красной бумажке конго или по универ­сальному индикатору. Бумажка конго изменяет цвет в синий в присутствии свободных минеральных кислот или органических кислот в больших концентрациях.

Щелочная реакция среды объекта по лакмусу (красный лакмус си­неет) указывает на наличие ОН-ионов. Значительное количество этих ионов в объекте исследования может быть обусловлено:

1) наличием едких щелочей а также NН₄ОН,

2) наличием карбонатов, а также и растворимых силикатов, образующих ионы ОН^- вследствие гидролиза:

(NH₄)₂CO₃ + НОН = NH₄ОН + NH₄HCO₃

Na₂SiO₃ + HOH = NaHSiО₃ + NaOH

3) щелочным брожением биологического материала; при этом в качест­ве продуктов щелочного брожения образуются аммиак и сероводород;

4) наличием некоторых легкогидролизуемых солей слабых кислот и сильных оснований (NaСN, NаNО₂ и др.).

Для предварительного исследования на наличие едких щелочей, карбонатов или растворимых силикатов (в случае щелочной реакции на лакмус) проделывают следующее испытание: к исследуемому водному раст­вору добавляют фенолфталеин (индикатор), а затем несколько капель BaCl₂ или Ba(NO₃)₂. При наличии NаОН или KОН малиновая окраска фенолфталеина не исчезает (может стать менее интенсивной), так как ОН-ионы в жидкости сохраняются:

2 NaОН + BaCl₂ = Ba(OH)₂ + 2 NаС1

При наличии карбонатов и растворимых силикатов малиновая окраска фенолфталеина от действия BaCl₂ исчезает:

Na₂CO₃ + BaCl₂ = Ba₂CO₃ + 2 NaCI

Для определения аммиака в исследуемом объекте колбу с объектом закрывают корковой пробкой, к нижней поверхности которой при­крепляют три индикаторные бумажки: красная лакмусовая бумажка; бумажка, смоченная раствором ацетата свинца и бумажка, смоченная раствором сульфата меди. Если в исследуемом объекте содержится аммиак, то смоченная водой красная лакмусовая бумажка и бу­мажка, смоченная раствором сульфата меди синеют:

2 CuSO₄ + NH₄OH = (NH₄)₂SO₄ + (CuOH)₂SO₄

(CuOH)₂SO₄ + (NH₄)₂SO₄ + 6 NH₄OH = 2[Cu(NH₃)₄]SO₄ + 8 H₂O

синяя окраска

При наличии в исследуемом объекте H₂S бумажка, смоченная раствором ацетата свинца, чернеет:

Рb₂ (СН₃СОО)₂ + Н₂S = РbS ¯ + 2 СН₃СООН черный